Президиум РАНДоклады Российской академии наук. Науки о жизни Doklady Biological Sciences

  • ISSN (Print) 2686-7389
  • ISSN (Online) 3034-5057

ИЗМЕНЕНИЕ РЕПЕРТУАРА ВНЕКЛЕТОЧНЫХ ВЕЗИКУЛ, СЕКРЕТИРУЕМЫХ КЕРАТИНОЦИТАМИ КОЖИ, ПОД ДЕЙСТВИЕМ БЕЛКА ЧЕЛОВЕКА SLURP-2

Код статьи
S30345057S2686738925020078-1
DOI
10.7868/S3034505725020078
Тип публикации
Статья
Статус публикации
Опубликовано
Авторы
Том/ Выпуск
Том 521 / Номер выпуска 1
Страницы
208-213
Аннотация
Внеклеточные везикулы, секретируемые кератиноцитами, являются участниками межклеточного взаимодействия, содержат различные белки, мРНК, миРНК и липиды, благодаря которым могут активировать миграцию клеток и пролиферацию. Секретируемый белок человека SLURP-2 регулирует рост и дифференцировку эпителиальных клеток, влияет на жизнеспособность и миграцию кератиноцитов. В данной работе мы показали, что внеклеточные везикулы, секретированные кератиноцитами, обработанными SLURP-2, усиливали миграцию кератиноцитов HaCaT. Также было обнаружено, что в везикулах, секретируемых кератиноцитами в присутствии SLURP-2, снижается экспрессия миРНК-96 и миРНК-183, подавляющих миграцию и пролиферацию клеток. Таким образом, показано, что повышение миграции кератиноцитов под действием SLURP-2 связано в том числе с изменением репертуара внеклеточных везикул, секретируемых этими клетками.
Ключевые слова
SLURP-2 Ly6/uPAR никотиновый ацетилхолиновый рецептор кератиноциты ранозаживление внеклеточные везикулы миРНК
Дата публикации
15.04.2025
Год выхода
2025
Всего подписок
0
Всего просмотров
32

Библиография

  1. 1. Peña O.A., Martin P. Cellular and molecular mechanisms of skin wound healing // Nat. Rev. Mol. Cell Biol. Nature Publishing Group, 2024. Vol. 25, № 8. P. 599-616.
  2. 2. Colombo M., Raposo G., Théry C. Biogenesis, secretion, and intercellular interactions of exosomes and other extracellular vesicles // Annu. Rev. Cell Dev. Biol. 2014. Vol. 30. P. 255-289.
  3. 3. Glady A., Vandebroek A., Yasui M. Human keratinocyte-derived extracellular vesicles activate the MAPKinase pathway and promote cell migration and proliferation in vitro // Inflamm. Regen. 2021. Vol. 41. P. 4.
  4. 4. Narauskaitė D., Vydmantaitė G., Rusteikaitė J., et al. Extracellular Vesicles in Skin Wound Healing // Pharmaceuticals. 2021. Vol. 14, № 8. P. 811.
  5. 5. Arredondo J., Chernyavsky A.I., Jolkovsky D.L., et al. SLURP-2: A novel cholinergic signaling peptide in human mucocutaneous epithelium // J. Cell. Physiol. 2006. Vol. 208, № 1. P. 238-245.
  6. 6. Arredondo J., Chernyavsky A.I., Grando S.A. SLURP-1 and -2 in normal, immortalized and malignant oral keratinocytes // Life Sci. 2007. Vol. 80, № 24-25. P. 2243-2247.
  7. 7. Bychkov M.L., Shlepova O.V., Shulepko M.A., et al. Human Epithelial Protein SLURP-2 as a Prototype of Drugs for Wound Healing // Russ. J. Bioorganic Chem. 2024. Vol. 50, № 3. P. 696-705.
  8. 8. Lyukmanova E., Shulepko MA., Shenkarev Z., et al. Secreted Isoform of Human Lynx1 (SLURP-2): Spatial Structure and Pharmacology of Interactions with Different Types of Acetylcholine Receptors // Sci. Rep. 2016. Vol. 6, № 1.
  9. 9. Chernyavsky A.I., Kalantari-Dehaghi M., Phillips C., et al. Novel cholinergic peptides SLURP-1 and -2 regulate epithelialization of cutaneous and oral wounds // Wound Repair Regen. Off. Publ. Wound Heal. Soc. Eur. Tissue Repair Soc. 2012. Vol. 20, № 1. P. 103-113.
  10. 10. Lyukmanova E.N., Shulepko M.A., Bychkov M.L., et al. Human SLURP-1 and SLURP-2 Proteins Acting on Nicotinic Acetylcholine Receptors Reduce Proliferation of Human Colorectal Adenocarcinoma HT-29 Cells // Acta Naturae. 2014. Vol. 6, № 4. P. 60-66.
  11. 11. Bychkov M.L., Kirichenko A.V., Mikhaylova I.N., et al. Extracellular Vesicles Derived from Metastatic Melanoma Cells Transfer α7-nAChR mRNA, Thus Increasing the Surface Expression of the Receptor and Stimulating the Growth of Normal Keratinocytes // Acta Naturae. 2022. Vol. 14, № 3. P. 95-99.
  12. 12. Zhu J., Liu B., Wang Z., et al. Exosomes from nicotine-stimulated macrophages accelerate atherosclerosis through miR-21-3p/PTEN-mediated VSMC migration and proliferation // Theranostics. 2019. Vol. 9, № 23. P. 6901-6919.
  13. 13. Pathan M., Fonseka P., Chitti S.V., et al. Vesiclepedia 2019: a compendium of RNA, proteins, lipids and metabolites in extracellular vesicles // Nucleic Acids Res. 2019. Vol. 47, № D1. P. D516-D519.
  14. 14. Siu M.C., Voisey J., Zang T., et al. MicroRNAs involved in human skin burns, wound healing and scarring // Wound Repair Regen. Off. Publ. Wound Heal. Soc. Eur. Tissue Repair Soc. 2023. Vol. 31, № 4. P. 439-453.
  15. 15. Wu P., Cao Y., Zhao R., et al. miR-96-5p regulates wound healing by targeting BNIP3/FAK pathway // J. Cell. Biochem. 2019. Vol. 120, № 8. P. 12904-12911.
  16. 16. T L., X Z., Y W. miR-183-3p suppresses proliferation and migration of keratinocyte in psoriasis by inhibiting GAB1 // Hereditas. Hereditas, 2020. Vol. 157, № 1.
  17. 17. Viticchiè G., Lena A.M., Cianfarani F., et al. MicroRNA-203 contributes to skin re-epithelialization // Cell Death Dis. 2012. Vol. 3, № 11. P. e435.
  18. 18. Liu A., Zhang B., Zhao W., et al. MicroRNA-215-5p inhibits the proliferation of keratinocytes and alleviates psoriasis-like inflammation by negatively regulating DYRK1A and its downstream signalling pathways // Exp. Dermatol. 2021. Vol. 30, № 7. P. 932-942.
  19. 19. Z M., J Q., H Z. MiR-221-3p as a Potential Biomarker for Patients with Psoriasis and Its Role in Inflammatory Responses in Keratinocytes // Skin Pharmacol. Physiol. Skin Pharmacol Physiol, 2021. Vol. 34, № 5.
  20. 20. Chao L., Hua-Yu Z., Wen-Dong B., et al. miR-96 promotes collagen deposition in keloids by targeting Smad7 // Exp. Ther. Med. 2019. Vol. 17, № 1. P. 773-781.
QR
Перевести

Индексирование

Scopus

Scopus

Scopus

Crossref

Scopus

Высшая аттестационная комиссия

При Министерстве образования и науки Российской Федерации

Scopus

Научная электронная библиотека