Президиум РАНДоклады Российской академии наук. Науки о жизни Doklady Biological Sciences

  • ISSN (Print) 2686-7389
  • ISSN (Online) 3034-5057

МИКОБИОТА КИШЕЧНОДЫШАЩЕГО (HEMICHORDATA, ENTEROPNEUSTA) И ЕГО МЕСТООБИТАНИЯ

Код статьи
S30345057S2686738925020217-1
DOI
10.7868/S3034505725020217
Тип публикации
Статья
Статус публикации
Опубликовано
Авторы
Том/ Выпуск
Том 521 / Номер выпуска 1
Страницы
299-304
Аннотация
Известно, что ткани и слизь кишечнодышащих содержат фенольные соединения, ингибирующие активность аэробных бактерий. В настоящей работе проведено исследование микобиоты тканей, смывов с поверхности тела и норок кишечнодышащего (Wagner, 1885). В посевах образцов кишечника обнаружено 3 вида грибов. Из смывов с поверхности тела выделено 7 видов, из образцов норок - 5 видов, из образцов осадка в месте обитания - 15 видов. Посевы интактных особей, жаберных перегородок и осевого органа не выявили роста мицелиальных грибов; это свидетельствует о том, что ткани кишечнодышащих могут обладать фунгистатическим действием.
Ключевые слова
полухордовые морские грибы ткани кишечнодышащих норки кишечнодышащих донные грунты Белое море
Дата публикации
15.04.2025
Год выхода
2025
Всего подписок
0
Всего просмотров
47

Библиография

  1. 1. Van der Horst C.J. Observations on some Entero-pneusta // Videnskabelige meddelelser fra Dansk Naturhistorisk Forening i København. 1929. Vol. 87. P. 135-200.
  2. 2. King G.M. Inhibition of microbial activity in marine sediments by a bromophenol from a hemichordate // Nature. 1986. Vol. 323. P. 257-259.
  3. 3. Richards T.A., Jones M.D., Leonard G., Bass D. Marine fungi: their ecology and molecular diversity // Annual Review of Marine Science. 2012. V. 4. P. 495-522.
  4. 4. Gonçalves M.F., Esteves A.C., Alves A. Marine fungi: Opportunities and challenges // Encyclopedia. 2022. V. 2. P. 559-577.
  5. 5. Frisvad J.C., Samson R.A. Polyphasic taxonomy of Penicillium subgenus Penicillium. A guide to identification of food and air-borne terverticillate Penicillia and their mycotoxins // Studies in mycology. 2004. V. 49. P. 1-174.
  6. 6. Domsch K.H., Gams W., Anderson T.-H.Compendium of Soil Fungi // Eching, Germany: IHW-Verlag. 2007. 672 p.
  7. 7. Pitt J.I., Hocking A.D. Aspergillus and related teleomorphs // Fungi and Food Spoilage. 2009. P. 275-337.
  8. 8. Ivanova N., Grainger C., Hajibabaei M. Glass fiber DNA extraction: A new inexpensive method for high throughput DNA isolation // CCDB Advances, Methods Release. No. 1. 2006.
  9. 9. Osterburg H.H., Allen J.K., Finch C.E. The use of ammonium acetate in the precipitation of ribonucleic acid // Biochemical Journal. 1975. V. 147. P. 367-368.
  10. 10. Бубнова Е.Н., Никитин Д.А. Грибы в донных грунтах Баренцева и Карского морей // Биология моря. 2017. Т. 43. С. 366-371.
  11. 11. Бубнова Е.Н., Георгиева М.Л., Грум-Гржимайло О.А. Способ выделения и учета грибов, развивающихся в морских грунтах // Микробиология. 2018. Т. 87. С. 672-678.
  12. 12. Бубнова Е.Н., Коновалова О.П. Грибы в донных грунтах Чукотского моря // Биология моря. 2019. Т. 45. С. 86-96.
  13. 13. Pagani D.M., et al. Susceptibility to antifungal agents and enzymatic activity of Candida haemulonii and Cutaneotrichosporon dermatis isolated from soft corals on the Brazilian reefs // Archives of Microbiology. 2016. V. 198. P. 963-971.
  14. 14. Edrada R.A., et al. Online analysis of Xestodecalactones A- C, novel bioactive metabolites from the fungus Penicillium cf. montanense and their subsequent isolation from the sponge Xestospongia exigua // Journal of natural products. 2002. V. 65. P. 1598-1604.
  15. 15. Flewelling A.J., Johnson J.A., Gray C.A. Isolation and bioassay screening of fungal endophytes from North Atlantic marine macroalgae // Botanica Marina. 2013. V. 56. P. 287-297.
  16. 16. Olivier F.A., et al. Aerial warfare: An inducible production of volatile bioactive metabolites in a novel species of Scytinostroma sp. // Fungal Genetics and Biology. 2022. V. 158. 103646.
  17. 17. Никитин Д.А., и др. Ферментативная и антимикробная активность полярных штаммов почвенных микроскопических грибов // Микология и фитопатология. 2021. Т. 55. P. 36-50.
  18. 18. Girardi N., et al. Ecophysiological characteristics of the nematophagous fungus, Plectosphaerella plurivora, with biocontrol potential on Nacobbus aberrans s.l. in tomato // European Journal of Plant Pathology. 2023. V. 167. P. 867-881.
  19. 19. Han L., et al. First report of Plectosphaerella plurivora causing root rot disease in Panax notoginseng in China // Journal of Phytopathology. 2020. V. 168. P. 375-379.
  20. 20. Zhang T., et al. Diversity and distribution of cultured endolichenic fungi in the Ny-Ålesund Region, Svalbard (High Arctic) // Extremophiles. 2016. V. 20. P. 461-470.
QR
Перевести

Индексирование

Scopus

Scopus

Scopus

Crossref

Scopus

Высшая аттестационная комиссия

При Министерстве образования и науки Российской Федерации

Scopus

Научная электронная библиотека